小鼠I型膠原C端肽(CTX-I)Elisa試劑盒說明書
檢測原理:
本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法。用抗小鼠CTX-I抗體包被于酶標板上,實驗時標本或標準品中的CTX-I會與包被抗體結合,游離的成分被洗去。依次加入生物素化的抗小鼠CTX-I抗體和辣根過氧化物酶標記的親和素??剐∈驝TX-I抗體與結合在包被抗體上的小鼠CTX-I結合、生物素與親和素特異性結合而形成免疫復合物,游離的成分被洗去。加入顯色底物(TMB),TMB在辣根過氧化物酶的催化下現藍色,加終止液后變黃。用酶標儀在450nm波長處測OD值,CTX-I濃度與OD450值之間呈正比,通過繪制標準曲線求出標本中CTX-I的濃度。
標本收集:
1. 血清:全血標本于室溫放置2小時或4℃置夜后于1000×g離心20分鐘,取上清即可檢測,收集血液的試管應為一次性的無熱原,無內毒素試管。
2. 血漿:抗凝劑推薦使用EDTA.Na2,標本采集后30分鐘內于1000×g離心15分鐘,取上清即可檢測。避免使用溶血,高血脂標本。
3. 組織勻漿:用預冷的PBS (0.01M, pH=7.4)沖洗組織,以去除殘留血液(勻漿中裂解的紅細胞會影響測量結果),稱重后將組織剪碎。將剪碎的組織與對應體積的PBS(一般按1:9的重量體積比,比如1g的組織樣本對應9mL的PBS,具體體積可根據實驗需要適當調整,并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑)加入玻璃勻漿器中,于冰上充分研磨。為了進一步裂解組織細胞,可以對勻漿液進行超聲破碎,或反復凍融。zui后將勻漿液于5000×g 離心5~10分鐘,取上清檢測。
4. 細胞培養上清:取細胞培養上清于1000×g離心20分鐘,除去雜質及細胞碎片。取上清檢測。
5. 其它生物標本:1000×g離心20分鐘,取上清即可檢測
6. 標本應清澈透明,懸浮物應離心去除。
7. 標本收集后若不及時檢測,請按一次使用量分裝,凍存于-20℃/-80℃冰箱內,避免反復凍融,1-6月內檢測,4℃保存的應在1周內進行檢測。
8. 如果您的樣本中檢測物濃度高于標準品zui高值,請根據實際情況,做適當倍數稀釋(建議先做預實驗,以確定稀釋倍數)。
小鼠I型膠原C端肽(CTX-I)Elisa試劑盒說明書
注意事項:
- 保存:試劑盒中各試劑請按說明書提示合理存放。在儲存及溫育過程中避免將試劑暴露在強光中。所有試劑瓶蓋須旋緊以防止蒸發和微生物的污染,否則可能會出現錯誤的結果。
- 酶標板:剛開啟的酶標板孔中可能會有少許水樣物質,此為正常現象,不會對實驗結果造成任何影響。
- 加樣:加樣或加試劑時,*個孔與zui后一個孔的加樣時間間隔如果太大,將會導致不同的 “預溫育”時間,從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性。每次的加樣時間控制在10分鐘內。推薦設置復孔。
- 溫育:為防止樣品蒸發,實驗時必須給酶標板覆膜;洗板后應盡快進行下步操作,避免酶標板處于干燥狀態;嚴格遵守給定的溫育時間和溫度。
- 洗滌:洗滌過程中反應孔中殘留的洗滌液應在吸水紙上拍干,勿將濾紙直接放入反應孔中吸水。在讀數前要注意清除底部殘留的液體和手指印,以免影響酶標儀讀數。
- 試劑配制:Concentrated Biotinylated Detection Ab及Concentrated HRP Conjugate體積較小,運輸過程會使液體沾到管壁或瓶蓋,因此使用前1000轉/分離心1min,以使附著管壁或瓶蓋的液體沉積到管底。取用前,請用移液器小心吹打4-5次使溶液混勻。標準品、生物素化抗體工作液、酶結合物工作液請根據所需用量配制,并使用相應的稀釋液配制,不能混淆。請配制標準品及工作液,盡量不要微量配制(如吸取Concentrated Biotinylated Detection Ab時,一次不要小于10μL),以避免由于不準確稀釋而造成濃度誤差;請勿重復使用已稀釋過的標準品、生物素化抗體工作液、酶結合物工作液。若需要分次使用標準品應按照每一次用量分裝,將其放在-20~-80℃貯存。避免反復凍融。
- 顯色時間的控制:加入底物后請定時觀察反應孔的顏色變化(比如每隔5分鐘),如梯度已很明顯,請提前加入終止液終止反應,避免顏色過深影響酶標儀讀數。
- 底物:底物請避光保存,在儲存和溫育時避免強光直接照射。
- 混勻:充分輕微混勻對反應結果尤為重要,使用微量振蕩器(使用zui低頻率),如無微量振蕩器,可在反應前手工輕輕敲擊酶標板框混勻。
- 安全:試驗中請穿著實驗服并帶乳膠手套做好防護工作。特別是檢測血液或者其他體液標本時,請按國家生物試驗室安全防護條例執行。
- 不同批號的試劑盒組份不能混用(洗滌液和反應終止液除外)
- 試驗中所用的EP管和吸頭均為一次性使用,嚴禁混用,否則將影響試驗結果!
小鼠I型膠原C端肽(CTX-I)Elisa試劑盒說明書
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